牛结核γ-干扰素(TB-IGRA)ELISA检测试剂盒使用说明书
【产品简介】 本试剂盒应用双抗体夹心法测定标本中牛结核γ-干扰素(TB-IGRA)表达。用纯化的牛结核γ-干扰素(TB-IGRA)抗体包被微孔板,制成固相抗体,可与样品中结核γ-干扰素(TB-IGRA)相结合,经洗涤除去未结合的抗原和其他成分后再与HRP标记的结核γ-干扰素(TB-IGRA)抗体结合,形成抗体-抗原-酶标抗体复合物,经过彻底洗涤后加底物TMB显色。TMB在HRP酶的催化下转化成蓝色,并在酸的作用下转化成最终的黄色。用酶标仪在450nm波长下测定吸光度(OD值),与CUTOFF值相比较,从而判定标本中牛结核γ-干扰素(TB-IGRA)的存在与否,用于测定牛血清、血浆及相关液体样本中结核γ-干扰素(TB-IGRA)表达。
【产品内容】
试剂盒主要成分 |
数 量 |
酶标包被板 |
96T×5 |
阳性对照 |
1ml×2 |
阴性对照 |
1ml×2 |
酶标试剂 |
30ml×1 |
样品稀释液 |
30ml×1 |
底物液A |
30ml×1 |
底物液B |
30ml×1 |
终止液 |
30ml×1 |
30×浓缩洗涤液 |
50ml×1 |
封板膜 |
5份 |
说明书 |
1份 |
【用法与判定】 按以下步骤进行:
1需要自备的器材
1.1 微量移液器;
1.2 微量移液器配套使用的枪头;
1.3 用来稀释洗涤液的500 ml量筒;
1.4 适用于检测96T微孔板的酶标仪;
1.5 用于稀释样品的1.5 ml Ep管;
1.6 蒸馏水或去离子水。
2标本要求
2.1标本采集后尽早进行提取,提取按相关文献进行,提取后应尽快进行实验。若不能马上进行试验,可将标本放于-20℃保存,但应避免反复冻融
2.2不能检测含NaN3的样品,因NaN3抑制辣根过氧化物酶的(HRP)活性。
3 操作步骤
1. 编号:将样品对应微孔按序编号,每板应设阴性对照2孔、阳性对照2孔、空白对照1孔(空白对照孔不加样品及酶标试剂,其余各步操作相同)。
2. 加样:分别在阴、阳性对照孔中加入阴性对照、阳性对照50μl。然后在待测样品孔先加样品稀释液40μl,然后再加待测样品10μl(同一动物取经禽型PPD、牛型PPD和PBS刺激血浆样品各1份,操作见附件)。加样将样品加于酶标板孔底部,尽量不触及孔壁,轻轻晃动混匀。
3. 温育:用封板膜封板后置37℃温育30分钟。
4. 配液:将30倍浓缩洗涤液用蒸馏水30倍稀释后备用。
5. 洗涤:小心揭掉封板膜,弃去液体,甩干,每孔250μL 洗涤液,静置30秒后弃去,如此重复3次,拍干。
6. 加酶:每孔加入酶标试剂50μl,空白孔除外。
7. 温育:操作同3。
8. 洗涤:操作同5。
9. 显色:每孔先加入显色剂A50μl,再加入显色剂B50μl,轻轻震荡混匀,37℃避光显色15分钟。
10. 终止:每孔加终止液50μl,终止反应(此时蓝色立转黄色)。
11. 测定:以空白空调零,450nm波长依序测量各孔的吸光度(OD值)。 测定应在加终止液后15分钟以内进行。
4计算和结果判定:
试验有效性:阳性对照孔平均值≥1.00; 阴性对照平均值≤0.10
临界值(CUT OFF)计算:临界值=阴性对照孔平均值+0.15
阴性判定:样品OD值< 临界值(CUT OFF)者为牛结核γ-干扰素(TB-IGRA)阴性
阳性判定:样品OD值≥ 临界值(CUT OFF)者为牛结核γ-干扰素(TB-IGRA)阳性。
【注意事项】
1.操作严格按照说明书进行,本试剂不同批号组分不得混用。
2.试剂盒从冷藏环境中取出应在室温平衡15-30分钟后方可使用,酶标包被板开封后如未用完,板条应装入密封袋中保存。
3.浓洗涤液可能会有结晶析出,稀释时可在水浴中加温助溶,洗涤时不影响结果。
4. 封板膜只限一次性使用,以避免交叉污染。
5.底物请避光保存。
6.试验结果判定必须以酶标仪读数为准,使用双波长检测时,参考波长为630nm
7.所有样品,洗涤液和各种废弃物都应按传染物处理。终止液为2M的硫酸,使用时必须注意安全。
【规格与包装】96T×5
【贮藏与有效期】2~8℃避光保存,有效期为6个月
【联系人】 王金良 电话:0543-3403060
仅供兽医诊断使用
附件:牛结核γ-干扰素全血培养操作试验
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